Tirsdag den 1. maj 2012

Tirsdag den 1. maj 2012


Idag er vi blevet 100 % med alt, som skal laves i laboratoriet. 
Vi er nu gået 100 % ignag med skriveprocessen.

Torsdag den 26. april 2012

Torsdag den 26. april 2012

Hvad lavede vi:
Idag startede vi med at, ved hjælp af en skilletragt, at trække betacarotenen ud af meccerationsprøverne A4, B4 og C4, som vi havde stillet over sidste gang.
Da dette var gjort ville vi måle absorbans.
Vi startede med at måle absorbans på vores standartkurve.

Herefter målte vi absorbans på de resterende prøver fra alle forsøgene (før vi kunne måle absorbansen på disse, måtte vi fortynde en del gang, noter er taget). Dette gjorde vi får at finde ud af hvilken metode, middel og mængde der var det bedste at anvende, hvilket vi fandt ud af var C1, med revet gulerod uden væske, kloroform og 100 ml heraf.

Da vi havde fundet ud af dette, startede vi med at rive de hvide, gule og lilla gulerødder, så der her var 50 gram af hver. Disse satte vi til at ekstrakhere vha. meccerationsmetoden.

Hvad vil vi lave næste gang:
Næste gang vil vi måle absorbans på de tre forskellige slags gulerødder, ved en bølgelængde på 470. (470, da det er her betacaroten topper).
Hvis der er tid til det, vil vi også foretage en renhedstest på disse, sammenlignet med den købte betacaroten.

Mandag d. 23. april 2012

Mandag d. 23. april 2012


Det var meningen at vi idag ville måle absorbans på fortyndingsrækken, og ligeledes på de 57 meccerationsmetoder og de sidste to perkolationsmetoder. 
Dette kunne vi ikke da spektrofotometeret ikke virkede. 
Derudover var meccerationsmetoderne fordampet, hvilket ikke er helt forståeligt.

_______________
Hvad lavede vi:
Vi startede med at lave en visuel prøve så, og på den måde undersøge hvilken en af meccerationsmetoderne der gav mest. Dette gjorde vi ved at tage billeder og sammenligne disse, og ud fra dette var det prøve C1, der gav mest og B2, der gav mindst.
Herefter hældte vi 5 ml. kloroform i hver meccerationsprøve, for at kunne sammenligne farvekoncentrationerne på denne måde. (Vi ville her have målt absorbans på dem og de to perkolationsprøver).

Det var nu meningen at vi ved hjælp af absorbansen ville måle på, hvilken konsistens af gulerødderne der var bedst. Da vi ikke kunne dette, bestemte vi det visuelt, ved at kigge på prøverne, og da det var F1, der var den bedste af perkolationsmetoderne, var det her revet gulerod. Ligeledes var de C1 der var den bedste blandt meccerationsmetoderne. Dermed kunen vi konstatere, at det var konsistensen revet gulerod uden saft der var den bedste.
Herefter satte vi perkolationsmetoden F4 over (50 g. revet gulerod og 100 ml petroleumsether). vi observerede her at væsken blev helt gult. (se billede)

Herefter satte vi de tre meccerationsprøver over med henholdsvis:

A4: 50 g. revet gulerod u. saft m. 25 ml petroleumseter.

B4: 50 g. revet gulerod u. saft m. 50 ml petroleumseter.

C4: 50 g. revet gulerod u. saft m. 100 ml petroleumseter.

Hvad vil vi lave næste gang:
Næste gang skal vi måle absorbansen på samtlige prøver.
Derudover vil vi lave forsøg med gule, røde og hvide gulerødder.

Torsdag den 19. april 2012

Torsdag den 19. april 2012

Idag startede vi med at rive gulerødder så der var 50 g. revet gulerod uden saft og 50 g. ren gulerodssaft.
Derefter satte vi en perkolations ekstrahering (soxhlet).
Den første vi lavede var med 50 g. revet gulerod uden saft og 100 ml. kloroform
Dernæst lavede vi med 50 g. gulerodssaft med 100 ml kloroform.

Imens disse stod og ekstraherede, puttede vi de tre prøver A3, B3 og C3 med henholdsvis 50 g. rent gulerodssaft i hver med 25, 50 og 100 ml kloroform i i en skilletragt.

Herefter lavede vi en standart kurve ud fra den købte beta caroten med opløsningen 100 ml ionbyttet vand til 0,1 g. beta caroten. Denne opløsning fortyndede vi så 5 gange med 1/2. Efter vi havde fortyndet det, ville vi måle absorbans på det, men vi kunne ikke få spektrofotometeret til at virke, så dette må vente til en anden gang. Vi gik så i stedet i gang med at ekstrahere på 50 g væske, ved at bruge shoxlet apparatet, men resultatet af dette ikke en klar orange væske, som det havde været de andre gange, det var i stedet en grumset mørke orange væske, som det ikke ville være muligt at måle absorbans på.  De sidste af mecceration prøverne skilte vi farven fra, ved at bruge skilletragte.


Næste gang vil vi igen prøve at måle absorbans på vores fortyndningsrække, og på vores prøver, vi vil også sætte de andre mecceration prøver med ether over, så de er klar til torsdag i næste uge.

torsdag den 12. april 2012

Torsdag den 12. april 2012

Idag opdagede vi, at vi havde lavet vores forsøg, absorbans målinger m.m. helt forkert og derfor måtte starte helt forfra.

Så idag startede vi med at rive gulerødder så der ialt var:

Meccerationsmetoden:
150 g. revet gulerod m. saft
150 g. gulerod u. saft
150 g. rent gulerods saft.
Dernæst satte vi igen meccerationsmetoderne over, med følgende optmålinger i de forskellige glas:
A1: 50 g. revet gulerod m. saft og 25 ml kloroform.
A2: 50 g. revet gulerod m. saft og 50 ml kloroform.
A3: 50 g. revet gulerod m. saft og 100 ml kloroform.
B1: 50 g. gulerod u. saft og 25 ml kloroform
B2: 50 g. gulerod u. saft og 50 ml kloroform
B3: 50 g. gulerod u. saft og 100 ml kloroform
C1: 50 g. gulerodssaft og 25 ml kloroform.
C2: 50 g. gulerodssaft og 50 ml kloroform.
C3: 50 g. gulerodssaft og 100 ml kloroform.

Vi opdagede her, at den kloroform vi havde brugt forhen, dannede faser når vi hældte det over i et rent bægerglas. Den ene fase var nærmest géle-agtig. Derfor valgte vi at åbne for en helt ny omgang kloroform, der ikke havde været anvendt før.

Perkolationsmetoden:
Da de andre prøver var sat over, gik vi igang med at lave en perkolationsprøve. Dette lavede vi ved hjælp af et soxhlet-apparat.
Vi startede med at prøve med 50 g. revet gulerod u. saft og 25 ml. kloroform. Vi observerede her, at der ikke var nok ekstraktionsmiddel i soxhlet apparatet, og kan dermed udelukke, at vi ikke kan anvende denne metode til de prøver med blot 25 ml. kloroform i.
Dernæst prøvede vi igen, denne gang med 50 g. gulerodsvæske og 50 ml kloroform. Igen som før var der ikke nok ekstraktionsmiddel, og dermed kan vi udelukke alle tre prøver med 50 ml kloroform.
Til sidst prøvede vi med 50 g. gulerod med væske og 100 ml. kloroform. Denne viste sig at lykkedes, og vi lod det kører igennem af 5 omgange.

Denne gang nåede vi ikke mere.


Planen er, at næste gang, torsdag d. 19/4, at vi vil fortage en perkolations ekstraktion på de sidste to muilge prøver af blandingen:
1: 50 g. gulerod m. saft og 100 ml kloroform
2: 50 g. gulerodssaft og 100 ml kloroform.

Måle absorbans og fordampe klorormen.

Torsdag den 29. marts 2012

Torsdag den 29. marts 2012

Idag har vi målt hvor meget betacaroten, der var på de 6 prøver, vi sugefiltrede sidste gang.
Her fik vi et lidt underligt resultat, da bl.a. en af prøver havde en mindre masse i forhold til inden vi gik i gang med det.
Derudover har vi ved hjælp af en skilletragt, fået kloroformen med beta-caroten taget ud fra de sidste prøver. Herefter målte vi bl.a. bølgelængden af farven og absorbansen ved bølgelængden 452 nm, hvilken den er ved beta-caroten (kilde; Kemi A bogen).

Dog er der en ting som vi ikke helt har fundet ud af endnu. Vi opdagede at blandingen af kloroform og beta-caroten var nærmest ætsende. Bl.a. ætsede det igennem en plastik kuvette og gjorde et måleglas helt skævt. Vi prøvede at teste om det kunne være selve kloroformen der gjorde at måleglasset blev helt skævt, hvilket det ikke var. Ligeledes var måleglasset ikke varmt. (her henvises der til nedstående billeder)

Måleglas med beta-caroten (1,5 ml), vand (0,4 ml) og kloroform (2 ml).

Måleglas med rent kloroform hvor måleglasset har været helt fyldt op.

En fornuftig forklaring på dette har vi endnu ikke fundet, men vi har snakket om at undersøge hvad der er i en gulerod, da vi formoder at det er en kemisk reaktion der sker mellem kloroformen og beta-caroten.

Onsdag den 28. marts 2012

onsdag den 28. marts 2012

Idag har vi lige kort været nede og kigge til vores prøver i varmeskabet.
vi observerede her, at alt kloroformen var fordampet.
Derudover så vi også, at der var minimalt med beta-caroten i form af pulver, men derimod var det hele trængt ind i filterpapiret. Hermed kan vi ikke få skrabet beta-caroten i form af pulver og måle absorbans på dette. I stedet for vil vi i morgen veje hvor meget farve der sidder i filterpapiret, og så på den måde finde ud af, hvor der er kommet mest beta-caroten.

Derudover var vi inde og kigge til vores prøver i skilletragten. Her så det meget fint ud, og vi vil imorgen prøve at adskille kloroformen med beta-carotenen fra resten af væsken, og måle absorbansen direkte heri. Når vi har målt denne, vil vi gennem en sugefiltrator trække kloroformen ud af beta-carotenen, og derefter placere dette i at varmeskab for at fordampe kloroformen. Herefter vil vi måle filterpapiret og se på, hvor meget beta-caroten der er kommet ud af dette.

Mandag den 26. marts 2012

Mandag den 26. marts 2012.

- Idag arbejdede vi videre med vores meccerationsprøver.
Vi startede med at putte de tre prøver med ren gulerodsvæske og kloroform i en skilletragt. Disse lader vi stå til næste gang, torsdag d. 29. Her vil vi så skille farven fra resten og måle absorbans.

Alle tre mængder i hver sin skilletragt.

25 ml kloroform

50 ml kloroform

100 ml kloroform

- Udover dette sigtede vi væsken fra de 6 andre prøver. Dette gjorde vi gennem en si, hvor vi derefter sugefiltrerede resten af væsken gennem en sugefiltrater. Vi havde her lidt problemer med nogle af prøverne, da det ikke var alle, hvor vi kunne suge væsken fra. Dette kan måske skyldes, at der under ekstraktionen er sket en reaktion, hvor der er dannet en form for "slim", som måske har lagt sig i bunden af büchnertragten, og dermed laver en hinde så resten af væsken ikke kan komme igennem. Vi stillede det derefter i varmeskab, så kloroformen vil fordampe væk fra beta-carotenen.

Torsdag den 22. marts 2012.

Idag har vi fået uddelt noget af skrivearbejdet på selve rapporten, og dermed fået lavet titelblad og forord.

Marie er så småt gået i gang med at skrive om tilsætningsstoffer og Sandra om farvestoffer.

- Da Line (lærer) kom ned i laboratoriet gik vi i gang med at lave første forsøg, hvor vi her fik sat alle 9 meccerations ekstraheringer over, hvor vi vil lade disse stå til næste gang, mandag den 26/3, hvor vi her har tre timer. Det er meningen at vi mandag vil kigge på absorbansen af disse 9 mecceration og finde ud af, hvilken/hvilke der gav det/de bedste resultater.

De sidste to timer idag, vil vi bruge på at arbejde videre med rapporten, og skrive de optimeringer vi har gjort os idag.

Torsdag den 15. marts 2012.

- Idag har vi lavet en overordnet probemformulering.

- Derudover har vi lavet et dokument med skemaer til at udfylde når vi kommer i lab., for at vi har alle vores noter fra lab. samlet et sted.

- Vi har også lavet et forforsøg til spektrofotometeret, for at finde ud af hvordan dette virker. Dette forsøg har vi tænkt os at ligge om i vores bilag som "forforsøg til spektrofotometeret"

- Vi har også lavet et dokumnt til vores bilag som hvordan eleverne skal opfører sig i et lab. som hedder "God Laboratoriepraksis", som omhandler sikkerhed, glas og instrumenter, kemikalier, førstehjælp ved uheld og oprydning.

Næste gang, torsdag d. 22/3, har vi tre timer til rådighed. Disse vil vi bruge på at lave opsummering og måske få uddelt noget skrivearbejde.